2. 广东工业大学环境生态工程研究院, 广州 510006;
3. 中国水利水电科学研究院流域水循环模拟与调控国家重点实验室, 北京 100038
2. Institute of Environmental and Ecological Engineering, Guangdong University of Technology, Guangzhou 510006, China;
3. State Key Laboratory of Simulation and Regulation of Water Cycle in River Basin, China Institute of Water Resources and Hydropower Research, Beijing 100038, China
塑料是一种化学稳定性高、可塑性强的高分子合成材料,广泛应用于包装、建筑、纺织、制药、农业生产和电子制造行业[1]。据统计,全球塑料年产量约为3.59亿t[2],其中绝大多数为一次性使用。塑料的高消耗伴随着大量塑料废物的产生,但只有一小部分(6%~26%)会被回收利用[3]。塑料废物的不适当倾倒或管理不当导致其在陆地和海洋生态系统中的积累[4],并且因太阳辐射、机械力和微生物等作用破碎/分解成更小的碎片,造成了严重的环境污染和风险。
近年来,微塑料(microplastics,MPs)在不同的环境介质中均被检测到[5-6]。微塑料一般是指粒径小于5 mm的塑料颗粒,其尺寸下限还没有明确的定义,广义的微塑料还包括纳米塑料(< 1 μm)。与大碎片相比,微塑料由于其丰度高、粒径小且能够长距离运输而更具危害性[1]。一方面,微塑料可以充当各种污染物在环境介质中迁移的载体;另一方面,微塑料本身也含有添加剂等成分[7],其泄露会对环境造成污染。微塑料可以被生物摄食并沿食物链(网)传递到更高的营养级,可能会通过环境暴露和摄食对人体造成危害[8]。
目前,关于微塑料的研究主要集中在水生环境中,因为微塑料对水体和水生生物的危害是最直接和显而易见的,并且水体中微塑料的采样和监测相对简单。土壤介质的复杂性及分析方法的限制使得土壤微塑料污染一直被忽视[6,9],只有很少的研究报道了土壤环境中微塑料的存在[10]。近年来的一些研究表明,土壤可能是较水体和沉积物更大的微塑料的汇[11-12]。各种人类活动(农用地膜覆盖、灌溉、污水污泥和农业堆肥等)和气候现象(大气沉降、降水和洪水等)均对土壤中微塑料大量积累有着不可或缺的贡献[13-14],并且土壤中微塑料浓度在今后的一段时间还可能会持续增加[15-16]。一旦进入土壤,微塑料可能会经历不同的环境过程并引起各种生态风险[6]。然而,缺乏合适、系统的土壤微塑料分析方法使得各研究的侧重点和研究深度有所差异,难以横向比较和有效评估土壤微塑料的环境风险。
因此,本文总结并讨论了可用于土壤微塑料的分析方法的潜力和局限性,并提出当前分析技术的关键挑战和对未来研究的展望,以期为土壤微塑料分析技术的进一步发展提供支撑。本文涉及的微塑料的中英文名称、缩写及密度信息参见表 1。
土壤是一种十分复杂的环境介质,包含有机物、黏土、矿物质和土壤生物等。土壤中的各种基质与微塑料存在不同程度的结合。土壤基质与微塑料分离的有效性是后续识别和定量分析的基础。
1.1 物理分离法 1.1.1 筛分法筛分法是指采用1 mm和5 mm网格宽度(欧洲海洋框架战略指南MSFD)的筛网对不同尺寸的微塑料进行分选的方法[17],常用于干土样品中微塑料的初步分离,可以在一定程度上简化微塑料的进一步分析检测。在以往的研究中存在不同的筛分尺寸。例如,对于干燥的沉积物/海滩样品,Phuong等[18]采用1 mm筛进行筛分,Ballent等[19]采用5.6 mm、2.0 mm以及0.063 mm的筛网进行筛分,而美国国家海洋和大气管理局(NOAA)建议采用5 mm筛去除较大的岩屑,再利用堆叠的5 mm和0.3 mm筛对分离的沉积物进行筛分[20]。对于土壤样品,一般建议先通过一个2 mm的筛管[12]。
1.1.2 静电分选法静电分选是基于土壤矿物和微塑料的导电性差异(土壤矿物 > 微塑料)实现对微塑料分离,是一种非常温和的处理方法,几乎不会破坏微塑料结构[21],但无法去除有机物。分选前一般需要对土壤/沉积物样品进行冷冻干燥预处理,以消除水分对土壤矿物和微塑料导电性的影响。Felsing等[22]首次成功修改出一套适用于土壤微塑料分选的KWS静电分离装置,对63 μm~5 mm尺寸范围内的6种微塑料的回收率均能达到90%以上,且不受微塑料密度、形状、结垢和老化的限制。然而,为了达到如此高的回收率,样品需要经过3次处理,每150克样品平均耗时3~4 h。此外,由于金属滚筒和刮刀的粘附力可能大于微塑料颗粒的重力,造成其回收率的下降。由此,该装置对于分选非常小的微塑料颗粒的适用性仍待考究。Enders等[21]对KWS静电分离装置进行了评估,发现微塑料的回收率高度依赖于其粒径大小,且该装置对细颗粒含量较高的土壤的分离效果较差。总体而言,该装置适合于分离粒径较大(100 μm以上)且分散性较好的沉积物和砂质土壤中直径大于500 μm且老化程度较低的微塑料[23],尤其适合于样品量较大(> 1 kg)的沉积物的分离。
1.1.3 密度分离法环境介质中发现的微塑料的密度通常为0.8~1.4 g·cm–3[24],而土壤样品的密度通常为2.6~2.7 g·cm–3[25],两者的密度差异使得密度分离法广泛应用于土壤介质中微塑料的提取。然而,土壤的团聚体效应使得微塑料与土壤有不同程度的融合[12],从而降低微塑料的提取效率,同时还会导致后续分析中出现信号畸变(如傅里叶红外光谱和拉曼光谱分析)。由此,在溶剂提取前通常采用超声、搅拌、曝气和连续流等方法来破坏附着体[26-27]。
目前,不同密度的溶液已用于土壤中微塑料的提取,其种类、密度及提取效率信息如表 2所示。
水溶液是最简单且无害的提取剂,但是其使用范围仅限于密度小于1 g·cm–3的微塑料颗粒。由于大部分农用地膜是由密度 < 1 g·cm–3的LDPE或PP制成[37],因此微塑料可以漂浮在蒸馏水上,降低分离成本。
当微塑料的密度未知时,提取和浮选需要使用高密度的盐溶液。NaCl溶液是欧洲海洋框架战略指南MSFD推荐且最为常用的微塑料提取剂,具有成本低、无毒害作用等优点[38]。大量研究表明,NaCl溶液的最大密度为1.2 g·cm–3(即饱和NaCl溶液密度),只能用于提取PE、PP和PS等密度较低的微塑料[20]。Liu等[29]虽然通过增加萃取和超声波处理的次数、延长浮选时间,成功使用NaCl溶液提取出PE、PP、PS、PA、PC、ABS和PMMA等7种塑料,但仍旧无法分离出PET、PVC等高密度聚合物。2019年的统计数据表明,PET和PVC产量占全球塑料总产量的17.9%[2],将不可避免地汇入土壤环境,采用低密度提取剂很可能造成对微塑料污染程度的低估。
为克服这一问题,研究者们开始关注其他高密度盐溶液的提取效果和应用潜力,其中一些已经实际应用于环境样品中(如CaCl2),而另一些仍处于实验探索阶段(如ZnBr2)。在土壤中,通常选用聚钨酸钠(3Na2WO4·9WO3·H2O,SPT)进行有机-矿物复合体中颗粒有机物和土壤有机质(SOM)的分离[39],该密度溶液也同样适用于土壤/沉积物中微塑料的分离[19]。CaCl2溶液也是常用的微塑料提取剂之一,与NaCl溶液相比,其提取效率相对较高,但是二价Ca2+可能会桥接有机分子的负电荷,促进土壤有机质结块,干扰后续微塑料的识别[9]。van Cauwenberghe等[40]提出微塑料提取剂的最佳密度范围是1.6~1.8 g·cm–3,使用NaI和ZnCl2可以满足这一要求。NaI溶液的密度高达1.8 g·cm–3,能提取所有类型的微塑料,但十分昂贵,并且氧化条件会限制其应用[34]。从经济成本和萃取效率的角度,Han等[33]建议采用NaCl和NaI 1︰1的混合溶液进行最佳浮选。Nuelle等[34]也采用NaCl和NaI的混合溶液对微塑料进行分离,其对各类微塑料分离效率为68%~99%。考虑到NaI对环境的危害和对水生生物的胚胎毒性,Liu等[31]建议使用NaBr溶液来提取土壤中的MPs,因为NaBr是一种安全、无腐蚀性和廉价的沉积物分离试剂。Imhof等[27]开发的慕尼黑塑料沉积物分离器(MPSS)使用ZnCl2溶液从沉积物种分离出各种微塑料,提取率高达95%~100%。Zobkov和Esiukova[41]验证了这一结果,但同时也发现其对老化塑料的提取率大幅降低,仅为13%~39%。同时,ZnCl2具有腐蚀性和危害性[42]。在使用过程中,为使ZnCl2达到最大密度,通常需要额外加入酸溶液,可能与土壤中的天然成分(尤其是碳酸盐)发生反应,导致形成致密的泡沫,严重妨碍提取过程[41]。Coppock等[43]基于MPSS原理设计了一种由PVC管、PVC球阀和由磁性搅拌棒搅拌的ZnCl2组成的沉积物-微塑料-沉积物隔离单元,兼具高提取率、低成本和便携的优点。但是来自PVC管的磨损可能污染样品,所以需要将PVC排除在分析之外,可能会造成大量的信息损失。挪威技术研究所同样基于MPSS原理开发设计了Bauta分离器,分离介质为ZnCl2和CaCl2的混合溶液,对纤维和球团的提取率分别能达到82%和100%[44],但是其对土壤样品的适用性还有待验证。其他密度溶液还包括ZnBr2[28]、NaCl-Na2WO4[45]和50% KI[18]等,相关研究尚处于起步阶段。
综上,与NaCl相比,这些替代方案均相对昂贵且具有一定的污染风险,在使用之前应根据研究目的和目标微塑料特性进行选择。采用密度分离法对各种微塑料的回收率均高于90%,说明该方法是有效的。密度分离方法由于操作简单而被广泛使用,但是它可能不适合分离粒径更小的塑料颗粒(< 10 μm)[46]。而小塑料微粒(< 50 μm)占总塑料微粒的35~90%[47-48],其含量不容忽视。如何有效分离提取土壤中的小颗粒微塑料是今后需要关注的问题。此外,微塑料与土壤基质有着不同程度的结合,采用密度分离法不足以去除有机物。
1.1.4 磁性分离法磁性分离法的实现主要依赖于微塑料的疏水性,由Grbic等[49]首次提出应用于微塑料的分离领域,其工作原理如下:通过疏水性碳氢化合物尾端(十六烷基三甲氧基硅烷,HDTMS)对铁纳米颗粒进行功能化,将疏水性的铁纳米颗粒与微塑料表面结合,进而利用磁铁提取出微塑料颗粒。该方法的回收率在49%(PP)到90%(PE)之间,土壤或其他环境介质中的亲脂性物质可能影响铁纳米颗粒与微塑料表面的特异性结合,从而降低微塑料的分离效果。磁性分离法会在一定程度破坏微塑料的结构(尤其是脆性微塑料或老化的微塑料),同时铁可能干扰后续微塑料的分析表征。Grbic等[49]提出了可能的解决办法:①通过限制微塑料与磁铁的接触缓解微塑料的破碎;②将微塑料置于表面活性剂或酸溶液中超声以去除微塑料表面的铁纳米颗粒。然而,这些解决方法仍存在一些问题,如超声会进一步破坏微塑料结构,对后续的分析造成影响。
相较于利用磁性分离法对微塑料进行分离提取,一些研究更关注于利用磁性材料对微塑料进行去除[50-51]。Rhein等[51]将磁种过滤(MSF)用于稀悬浮液中微塑料的分离,其分离效率在广泛的pH范围内均能达到95%。该过程的分离原理与Grbic等[49]提出的磁性分离法类似,通常包括以下两个步骤:①将磁种粒子分散到悬浮液中,并与目标粒子(微塑料)附聚;②通过磁分离除去新形成的磁性杂团聚体。通过选择正确的磁种颗粒以及使用永磁体,MSF能够达到长期、有效的分离效果,在一定程度上可以节约成本。同时,该方法对亚微米级别的微塑料具有良好的去除效果,能在一定程度上突破以往研究对小颗粒微塑料颗粒的分离瓶颈。此外,通过选择不同的磁种粒子可以调控可分离微塑料的粒径范围,可以根据研究目的灵活调整。例如,Misra等[50]采用磁性多氧金属酸盐支撑离子液相(magPOM-SILPs)实现了对水中特定有机、无机、微生物污染物及微塑料长期有效的去除,其对1 μm和10 μm的PS塑料微珠的去除率均接近100%。
1.1.5 淘析法淘析是利用向上的气体或液体流将较轻的粒子从较重的粒子中分离出来的过程。这一原理在海洋生物学中被广泛应用,例如使用“巴内特流态化沙浴”装置将小型动物从沙子中分离出来[52]。Claessens等[46]首先将淘析法应用于微塑料的分离,将其与NaI密度溶液结合,实现了对高密度微塑料(如PVC)的分离。他们根据淘析原理开发了一种PVC淘析塔,通过向上的水流将较轻的颗粒(微塑料和其他轻质材料)与较重的(沉积物)颗粒分离,样品量大幅减少,从而需要更少的密度溶液进行进一步的分离(如NaI的用量可减少97%),一定程度上解决了密度分离法的成本问题。淘析塔+NaI组合对于PE颗粒及塑料纤维的第一次萃取率分别为61%和75%,对PVC的三次萃取率高达100%。然而,上述研究仅考虑了在最大限度减少沉积物颗粒污染的条件下收集更多微塑料的方法优化,并未探讨在不考虑沉积物收集量时实现微塑料收集最大化的情况。Zhu[53]使用MODDE 10.1复合因子实验设计方法优化了淘洗塔的流速和直径参数,在不考虑沉积物收集量情况下实现了50.2%的微塑料最大可行回收率。Kedzierski等[54]根据Claessens等[46]的研究优化了淘析塔的设计,确定了沙粒和微塑料的分离速率与其密度和粒度分级的关系,并在不考虑沙粒回收率的条件下实现了 > 90%的PVC回收率。Hengstmann等[55]进一步优化设计了一套具有更小尺寸的玻璃淘析塔装置,对PET和PVC的回收率分别能达到80%和72%。该装置避免了PVC淘析塔对样品中PVC微塑料定量造成的影响,同时还减弱淘析塔尺寸带来的边缘效应。以上研究关注的最大微塑料密度为1.39 g·cm–3(PVC),是普通塑料中密度最高的一种,而某些含有添加剂的微塑料可以达到更高的密度[34],其适用性仍待进一步探索。同时,需要更完善的对照实验设计以确定淘析法对其他类型的微塑料及塑料纤维的回收效率。总体而言,淘析塔适用于环境样品中微塑料的分离,近期的一些研究也成功使用该装置对沉积物及废水污泥样品中的微塑料进行分离提取[56-57]。
1.1.6 泡沫浮选法泡沫浮选法是一种依赖于塑料密度及表面疏水性的分离方法,通常应用于回收行业[58],例如从废料和不同塑料混合物中分离塑料颗粒[59]或用于各类包装材料中PET的分离[60]。其原理如下:气泡将选择性地附着到疏水性更高的轻质微塑料颗粒上并向上携带,从而将它们与疏水性较小的基质分离[27,46]。但是,Imhof等[27]的实验结果显示,泡沫浮选从沉积物中分离出微塑料的平均效率非常低,仅为55%±28%,且在不同聚合物类型之间的差异很大。总体而言,泡沫浮选法能够较好地去除密度低的塑料颗粒,但是对密度高的塑料颗粒回收率低。泡沫浮选效果在很大程度上依赖于微塑料的物理特性[61],如容重、粒度、形状、表面能量和表面粗糙度。风化过程和塑料添加剂的使用也会改变塑料的表面特性,从而影响浮选效果[59]。
1.2 化学分离法 1.2.1 油提法油提法是指利用微塑料的亲油性将微塑料萃取到油层,而其他杂质保留在水中,从而实现微塑料的分离。该方法由Crichton等[62]首先提出。他们将干沉积物样品与水、菜籽油充分混合,直到油、水和矿物完全分开。一旦微塑料颗粒接触到菜籽油,将会被萃取到油层。根据Crichton等[62]的研究结果,7种微塑料的回收率超过90%,优于同一观测条件下采用NaI和CaCl2的密度分离效果。Crichton等[62]认为该方法简单、安全、廉价、省时,且经过酒精洗涤后无菜籽油残留,不会干扰后续微塑料的光学检测。然而,Lares等[63]对该方法的测试结果表明,酒精不能去除所有菜籽油的痕迹,会对后续的拉曼光谱和FTIR光谱鉴定产生影响。Mani等[64]最近的一项研究测试了蓖麻油对不同环境基质中微塑料的提取效果,结果显示蓖麻油对四种微塑料聚合物(PP、PS、PMMA和乙二醇改性聚对苯二甲酸乙二醇酯PET-G)的平均回收率高达99%±4%。然而,对于未加标的河流悬浮物样品,大多数(76%)PS微塑料没有被萃取到油层,而是在固相中被发现。对于富含有机物的样品,需要额外的H2O2消解步骤来实现样品纯化。此外,Lares等[63]指出,分离漏斗的使用(在Mani等的研究中也被使用)会限制微塑料回收的尺寸上限,分离含有较大颗粒的样品(如堆肥)时可能会堵塞漏斗。Scopetani等[65]针对以上问题,从油的种类和操作步骤两方面对油提法进行了进一步的优化。他们对不同密度和极性的油(如油菜籽、矿物油、合成油、橄榄油)进行了初步实验,优选出对微塑料具有更高亲和力的橄榄油作为萃取剂,同时通过冷冻样品避免了在分离过程中分液漏斗的使用。结果显示,该方法的分离回收率高达90%±2%~97%±5%,且对PS微塑料具有较好的萃取效果;微塑料样品经氧化和己烷冲洗后无油脂残留,不会影响到后续的光谱测定。
总体而言,油提法具有简单、安全、廉价、省时等优点,在实验室条件下展现出良好的提取效果,但是其对非人工添加的环境微塑料样品的回收效果还有待进一步的研究。
1.2.2 加压流体萃取加压流体萃取(PFE)是一种在亚临界温度和压力条件下使用的溶剂提取技术,可以从固体材料中回收半挥发性有机物,常用于土壤、沉积物和废物中的有机污染物的提取,是美国EPA认定的标准提取技术。Fuller和Gautam[66]首先开发了一种基于加压流体萃取技术的微塑料提取方法,操作步骤如下:①在100 ℃条件下采用甲醇对微塑料进行预萃取,以消除油脂等半挥发性有机化合物的干扰;②在180 ℃条件下采用二氯甲烷(DCM)进行加压流体萃取。结果显示,基于PFE的萃取方法对固体基质(如城市垃圾和土壤)中PE、PVC和PP等微塑料的平均回收率能达到84.5%~94%,并且可以有效提取粒径小于30 μm的微塑料。Dierkes等[67]同样先采用甲醇在100 ℃条件下进行预萃取,后采用毒性较低和挥发性较小的四氢呋喃(THF)作为二氯甲烷的替代,在185 ℃条件下提取微塑料,经历3个萃取周期后对PE和PP的提取率能达到86.7%和83.3%,分别在第4和第6个萃取周期后能完全萃取PE和PP。然而,上述方法中采用的甲醇预萃取步骤可能会去除一些塑料,导致对微塑料含量的低估。由于在100 ℃下可定量回收PC、PMMA和PS(> 93%),在180 ℃下可定量回收PE、PET、PP和PVC,Okoffo等[68]省略了甲醇预萃取步骤,直接采用二氯甲烷在180 ℃条件下实现对PE、PP、PVC、PS、PMMA、PC和PET微塑料的一步萃取,平均萃取效率 > 80%。然而,加压流体萃取过程可能会改变微塑料的粒子形态,从而影响后续的物理表征,因此无法准确判断微塑料的生物毒性、来源和移动性。尽管如此,加压流体萃取自动化程度高、成本低、效率高,仍是当前最有潜力的微塑料分离技术之一。
1.3 去除有机质的相关方法土壤中有机质的密度通常在1.0~1.4 g·cm–3之间,与PET和PA等微塑料的密度相近[26]。因此,对于高有机质含量的土壤而言,简单的密度分离法并不能很好地实现微塑料的分离[9],还需要增加有机物的去除步骤。土壤中有机质的去除方法包括酸消解、碱消解、氧化法及酶解法。表 3总结了采用不同实验方法对有机质的去除效果。
酸消解是指在开放式或封闭式系统中使用强无机酸氧化和破坏化合物,导致分子裂解,通常结合高温和高压条件使用,是一种相对剧烈的有机物去除方法,在一定程度上会消解微塑料本身[34,76,80,84]。目前被用于消化微塑料上附着的有机物的酸主要包括HNO3、HCl以及HNO3-HClO4。其中,HNO3是最常用酸消解剂,能在很短的时间内去除大分子有机质,且消解效果较好[9,46,69]。然而,HNO3作为酸消解剂时,会导致某些类型聚合物损失(如ABS、PA、PS和PET)[9,87]甚至消失(如尼龙)[88-89]。HCl不属于氧化性酸,消解效率一般较低,通常不用于有机物的消解,但是也可以发现一些使用HCl提取微塑料的研究[70-72]。HClO4是一种强氧化剂,能彻底分解有机物,但与有机物直接接触时会发生爆炸,因此通常与HNO3按照体积比1︰4组合使用[73],该方法也是ICES(国际海洋勘探理事会)建议使用的海洋动物组织消解方法[74]。
加热条件下会强化酸的消解效果,缩减消化时间[89]。然而,耐酸性低的聚合物在高温下更容易降解,采用(热)酸消解可能会造成对微塑料环境风险的低估[90]。此外,热酸消解可以在一定程度上促进黑炭的生成[91],无法去除微塑料上附着的黑炭颗粒,不推荐使用。因此,建议根据不同的研究目的和目标微塑料类型选择合适的消化方法来处理样品。
1.3.2 碱消解碱消解一般用于土壤中腐殖酸的提取,因此也可以用来消解土壤中的微塑料样品。目前较为常用的两种碱消解剂包括氢氧化钠(NaOH)和氢氧化钾(KOH)[35]。相较于酸消解,碱消解更为温和,适用于生物样本的消解,可以使蛋白质变性并水解化合物[92],且对微塑料结构的影响相对较弱[70,76]。然而,为了完全去除有机质,碱消解方案的运行周期通常需要2~3周[77],过程十分耗时,可能不适用于植物材料或稳定的土壤有机质的去除[26,75]。
通过增加摩尔浓度和温度可以提高碱消解效率[70,76]。然而,热碱消解会破坏特定种类微塑料的结构,如:NaOH热碱消解会破坏聚酯纤维、PE、PET、CA和PC[70,76],但是否破坏PA和PE结构在不同研究中存在争议[70,75-76];KOH热碱消解不会降解除CA外的微塑料,且CA在测试的各消解方案中均会发生降解[76]。因此,在消解过程中应避免使用CA过滤器,防止污染微塑料样品。对于易降解的塑料材料,建议采用KOH与NaClO 1︰1的比例混合[78]。此外,热碱消化对植物材料的消解效率较低[75],可能无法消除土壤中不溶于碱的有机物,其对土壤样品的适用性还有待探索。
1.3.3 氧化法过氧化氢(H2O2)是目前最常用于有机质去除的氧化剂[93-94],常用于土壤样品中有机物的去除[29],也适用于海洋生物和沉积物样品[26,95]。相较于酸/碱消解,采用H2O2对藻类和植物的消解效果更佳[75]。目前,大多数研究采用30%H2O2浓度进行消解[80-81],Shim等[96]也证实30%H2O2具有比其他浓度更高的消化效率。然而,对富含有机物的样品进行30%H2O2处理通常会导致形成致密的泡沫,从而使大部分样品悬浮在试剂上方[81],阻碍了样品的过滤和进一步处理,造成微塑料的回收率偏低[80]。此外,关于H2O2处理是否会破坏微塑料结构尚存争议[34,79,97]。一些研究通过改变浓度和消解温度来调节H2O2的消解效果[80-81]。通过降低H2O2浓度可以提升微塑料的回收率,低浓度的H2O2可以在较高的温度下达到与更高浓度相当的消解效果,然而升高温度可能会以牺牲温度敏感聚合物的回收率为代价。
Fenton试剂是一种高级氧化剂,也是H2O2的潜在替代品。Fenton法可以有效缩短反应时间,降低反应温度,其最适pH范围为3~5。Fenton法通过亚铁阳离子催化H2O2氧化有机成分,可以有效破坏H2O2难以消化的有机成分和无机化合物,且不会改变原始PE、PP和PVC微塑料的表面[97-98]。目前,Fenton法已成功用于去除废水[98]、土壤[97]、沉积物样品[99]以及植物材料和动物组织[100]中的有机物。但是,Fenton试剂对风化后微塑料的影响还有待探索。同时,某些生物源物质可能无法用Fenton法去除[82],因此可能需要补充有机去除步骤。此外,由于强烈的放热反应,应避免在超过60 ℃条件下[101](一说40 ℃[97])使用Fenton试剂处理富含有机物的样品,以避免热降解。
NOAA技术备忘录推荐采用湿室过氧化氢氧化法(WPO)消解水和沉积物样品中的有机质,该方法主要通过0.05 mol·L–1 Fe(Ⅱ)催化30%H2O2的消解(加热至75 ℃),但未说明有机质的消解效率和微塑料的回收率[20]。该方法对非塑料污染物(如人的头发、棉质服装纤维、香烟过滤嘴和厕纸碎片)没有明显的消解效果[83],且一般需要进行3~6次消化才能去除大多数纤维素和其他有机物质的干扰物,处理时间较长,难以实现对大量样品的分析。
1.3.4 酶解法目前,许多研究已报道酶解法适用于水生样品的处理,且对环境和塑料结构的危害较小[102],并具有较高的微塑料回收率,是一种有前途的有机质消解方法。Cole等[70]首先开发了一种采用蛋白酶K处理富含浮游生物的海水样品的酶消解方案,其消化效率大于97%(按重量计),优于酸/碱消解方案,且不降解微塑料。其他研究团队相继开发了胰酶、胶原酶、木瓜蛋白酶以及工业酶(如工业蛋白酶、工业脂肪酶和Corolase 7089)的酶消解方案并成功用于动物软组织的处理[84,103]。其中,工业酶价格相对便宜,能在一定程度上解决一般酶消解方案价格昂贵、消解周期长的弊端,具有良好的应用前景[84]。但是,这类蛋白质水解酶可能无法应用于土壤中稳定有机物的消解。
Mintenig等[85]将酶消解与H2O2处理相结合,成功用于废水样品中有机物的去除,但同样需要确认该方案对土壤样本的适用性。Löder等[86]提出了一种更有希望的顺序酶消解方法,将十二烷基硫酸钠纯化后的样品依次通过蛋白酶、纤维素酶和几丁质酶在特定温度下消解不同时间,实现了对有机物的高去除效率,足够适用于复杂的水生样品,但对于陆生植物和土壤有机质的去除可能需要另一套酶。根据Möller等[82]的观察以及Löder等[86]的建议,将Fenton试剂、SDS和特定酶的顺序组合可以增强对土壤有机质的消解效果。
2 土壤微塑料的识别和定量方法目前,土壤中微塑料常用的识别方法包括物理识别(即目视鉴定)和化学识别(如光谱分析和质谱分析);定量方法包括计数、称重、数学计算和仪器分析。
2.1 目视鉴定法目视鉴定法是微塑料分析中必不可少的步骤,可以直接、快速地获得环境中微塑料的表面纹理和其他特征信息。根据微塑料的大小、形状和颜色特性可以对微塑料进行初步分类。根据尺寸,可将微塑料分为大微塑料(1~5 mm)和小微塑料(< 1 mm)。根据形状,可将微塑料分为纤维(fiber)、碎片(fragment)、微珠(pellets/beads)、泡沫(foam)和薄膜(film)五类。环境中检测出的微塑料颜色包括红色、白色、透明、蓝色、绿色、黑色、紫色、浅黄色和棕色。
一般肉眼只能检测到可见的微塑料颗粒[104],需要辅以显微镜分析来评估更细的颗粒[79]。直径 > 1 mm的微塑料很容易被识别,而直径 < 1 mm的微塑料则很难被识别[24,105],需要借助立体/解剖显微镜和专业图像软件;对于尺寸更小、没有颜色或典型形状的的微塑料(< 100 μm)基本无法通过视觉或显微镜进行识别。一些研究通过后续的化学识别结果(包括扫描电子显微镜[47]、拉曼[105]及傅里叶红外分析[24])判断出目视鉴定法应用于沉积物微塑料分析时错误率高达20%~70%。随着微塑料颗粒尺寸的减小和干扰的增加,这种误差会增大。因此,不建议将目视鉴别法作为当前微塑料检测中的独立识别方法。
Zhang等[106]根据热塑性塑料加热前后物理性质(如形状、透明度)的变化开发了一种更为简单和经济的视觉识别方法。他们通过比较密度分离后的样品在130 ℃下加热前后拍摄的显微图像,将熔融颗粒鉴定为热塑性聚合物,成功从土壤中识别出PE和PP微塑料。这种加热方法不受土壤有机质的影响,且可以识别粒径小于100 μm的粒子。此外,通过借助显微镜和图像软件,该方法还可以直观地确定微塑料颗粒的大小、形状和数量。尽管加热法在一定程度上忽略了热固性塑料及可熔的天然物质(如蜡)的影响,且对微塑料形状结构有一定的破坏,但在大多数现场实验中仍是一种经济可行的鉴定方案。Zubris和Richards[107]使用偏振光显微镜来识别土壤中的合成纤维。该方法是一种基于合成纤维和天然纤维在偏振光下不同物理特性的视觉识别方法,不会破坏聚合物[108],但需要确认其是否适用于鉴定其他塑料和区分塑料类型。Maes等[35]使用亲油性荧光染料尼罗红来专门染色环境样品中的微塑料颗粒,根据其荧光特性进行鉴定。然而,该方案对富含有机质的土壤样品的适用性还有待考证,因为染料可能会通过非选择性吸附与其他亲脂性化合物结合,影响鉴定结果。
2.2 光谱分析法红外光谱法(FTIR)和拉曼光谱法(Raman)是微塑料分析种最常见、最可靠但是也最昂贵的方法[24,27],可以精确识别微塑料的类型、丰度、形状和大小,但无法鉴定土壤中微塑料的质量含量[105]。
FTIR可以记录化学物质的特定化学键,通过将得到的目标聚合物的光谱与谱库中的标准图谱进行对比,可以识别出特定微塑料的类型。然而,FTIR结果受到测量颗粒的形状、大小和颜色等的干扰。例如,由于红外辐射的高吸收,通常会导致无法识别黑色微塑料颗粒的FTIR光谱。同时,样品中的多种聚合物同时存在时会产生复杂的吸收光谱,妨碍微塑料的鉴定。此外,FTIR技术在土壤中的应用效果还取决于是否有效去除土壤有机质的干扰。
Raman是一种光子散射技术,根据不同样品分子结构和原子的不同,落在物体上的激光束会产生不同频率的反向散射光,从而得到不同聚合物独有的光谱图像。Raman可对样品进行低至500 nm像素分辨率的化学成像,运行时间显著高于FTIR[95,109],但不受测量颗粒的形状、大小或厚度等的干扰。此外,Raman对水和大气中的CO2不敏感。但是,土壤有机质的自发荧光或聚合物中有机物或颜料的背景荧光可能会强烈干扰所需的光谱,从而导致无法识别[110]。此外,光解老化后的微塑料的特征光谱会发生变化(如PVC的特征性C-Cl键的信号减弱),建议参考数据库中应包括聚合物不同降解程度的光谱数据[111]。总体而言,两种光谱技术均较为耗时,且在处理土壤有机质含量高的土壤样品时均存在一定的困难。Raman能更好地响应非极性对称键,而FTIR可以更清晰地鉴定极性基团[105],这两种技术具有互补性。进行分析之前,两种技术均需要对样品进行彻底的纯化[112]。
将近红外(NIR)光谱分析与化学计量学结合用于微塑料的定量分析,可以克服上述光谱技术耗时的缺点,且无需任何化学预处理即可快速评估微塑料的化学组成[113]。Corradini等[114]评估了使用vis-NIR光谱快速评估土壤中微塑料含量的可能性,结果表明,vis-NIR技术适用于定量土壤中的PET、LDPE和PVC,准确度为10 g·kg–1,检测极限约15 g·kg–1,但准确性较低。此外,该研究在测试中采用干燥的土壤样品与微塑料混合,一定程度上忽略了环境微塑料样品的吸附和生物污染等带来的影响。
将FTIR和Raman与不同的元件进行组合可以提高对微塑料的识别精度。例如,将FTIR或Raman与光学显微镜联合使用(即μ-FTIR和μ-Raman),可以分别识别 > 10 μm和 > 1 μm的微塑料[95,105]。配备了显微镜的FTIR可以使用衰减全反射率(ATR)和基于焦平面阵列(PFA)的反射成像模式。其中,ATR-FTIR光谱技术通过显微镜鉴定单个颗粒,然后使用ATR尖端进行检测,可以识别粒径 > 500 μm的颗粒[115]。基于FPA反射成像模式的μ-FTIR光谱技术具有较高的横向分辨率,配置有用于空间分辨光谱的自动xyz载物台,能够使用空间分辨光谱检测选定网格区域内的单个粒子。该技术将化学成像和光谱分析的结合,与单次成像相比,速度更快且不影响空间分辨率,可以识别粒径20~500 μm的颗粒[86],但仍至少需要9个小时才能扫描一张滤纸。将FTIR和Raman与原子力显微镜(AFM)结合,可以突破 < 1 μm的尺寸限制,为纳塑料的识别提供了一种有效的解决途径。AFM探头可以通过与样品接触和非接触方式提供纳米级分辨率的图像,将AFM与FTIR或Raman结合可以确定样品的化学成分。其中,AFM-Raman是两台仪器的简单组合,通过同时或独立扫描实现;AFM-IR是将两种仪器合并在一起,可以得到50~100 nm的空间分辨率的红外吸收图像,且该方法已成功用于100 nm PS纳塑料的识别[116]。然而,使用AFM-IR在未知样品中找到要聚焦的纳塑料是十分困难且耗时的,且该方法在识别土壤介质中复杂微塑料方面的应用效果还未可知。
Shan等[117]的研究表明,高光谱成像技术也是一种潜在的微塑料识别技术,可以直接确定和可视化土壤表面粒径范围0.5~5 mm的微塑料。Primpke等[118]利用基于量子级联激光的高光谱红外化学成像技术与自动数据分析相结合的方法,实现了对更大视野范围内微塑料的快速测量,即在36 min内测定了144 mm2区域范围内的微塑料。相较于现阶段的检测技术(测量时间从数小时到数天不等),该方法具有很高水平的数据质量和优越的检测效率,为微塑料自动化分析的进一步发展提供了启示。
2.3 热分析方法热分析方法是根据聚合物的热稳定性来测量其物理和化学性质的变化,从而鉴定出微塑料的方法。表 4总结对比了现阶段热分析方法的原理和优劣。
热解气相色谱质谱法(Py-GC-MS)主要通过分析聚合物的热降解产物来鉴定微塑料类型,是一种破坏性技术。首先,样品在惰性气氛下热降解;其次,通过气相色谱法(GC)分离热解后的微塑料的结构片段;最后,使用MS对其进行鉴定和定量。该方法可以用于表征和大规模量化多种聚合物类型及其有机添加剂[34,119-120],适用于环境样品中微塑料的检测[121],无需进行样品预处理。但是,该方法的最高操作温度为250~300 ℃,沸点高于300 ℃的高分子量热解产物通常会污染甚至堵塞管路,并导致传输损失[122]。同时,该方法还会受到样品量大小的限制,即一次测量仅分析少量样品(5~200 μg)[123]。
热重分析法(TGA)是指在惰性气氛下,采用程序控温加热样品,根据不同微塑料的质量损失与温度或时间的关系来识别微塑料的方法,常用于土壤环境样品中微塑料的分析[124]。将TGA与其他分析设备结合使用时,可以获得更详细的测量数据。差示扫描量热法(DSC)和质谱仪(MS)可以分别提供微塑料样品气体产物的定性和定量信息。将TGA与DSC结合可以识别不同微塑料吸热相变热流和峰值温度,并成功用于识别废水样品中的PE和PP微塑料[125]。将TGA与MS结合可在质谱检测器上检测离子信号并测量微塑料样品的质量损失。David等[126]成功采用TGA-MS定量分析土壤样品中的PET,且无需对样品进行预处理。与Py-GC-MS相比,TGA-MS更适用于大批量样品,但在数据解释方面难以分辨质量和降解温度相似的复合物[127]。现阶段,热重分析法还仅限于上述种类微塑料的识别,仍需要进一步开发。同时,热重分析法会破坏微塑料结构,无法进行后续分析(如获取微塑料的形状、尺寸、颜色等信息)。
热萃取-热解气相色谱质谱法(TED-GC-MS)是热重分析和固相萃取热解吸的结合,可以对PE、PET、PP和PS进行精确而有效的定量分析[122]。该方法将分析过程分为热萃取过程和GC-MS系统,克服了Py-GC-MS方法中高分子量热解产物污染/堵塞管路的问题。同时,该方法突破了Py-GC-MS对样品量的限制,每次运行最多可容纳100 mg样品,处理时间仅为2~3 h[122],但同样对微塑料结构具有破坏性。
3 展望由于采用的分离、识别和定量手段的不同,不同的研究者对实验结果的表述存在较大差异,导致不同地区的微塑料的分析数据和污染程度难以横向比较。同时,一些应用于水体/沉积物/水生生物中微塑料分析的很有潜力的方法,在应用于土壤时都存在一定的限制。由此,本文提出以下展望:
1)根据不同的研究目的选择适合的分离和识别定量方法。针对特定种类的微塑料的分析,可以采用高效且不损害目标微塑料的方法。例如,实验室对特定微塑料的研究以及农田中微塑料(主要是PP和PE)的分离提取,均可针对目标微塑料的性质选择合适的分离分析方法。针对环境样品的采集和未知塑料种类的统计,在选择分离分析方法时需要考虑是否会降解一些稳定性较低的塑料纤维(如PE,PA和聚酯纤维),从而造成对某类微塑料污染的低估。
2)建立适合土壤中小颗粒微塑料的分析方法。目前,暂时没有适用于土壤中小颗粒微塑料的分离分析方法,但是通过修改和组合已有方法可能可以实现,这方面的研究需要进一步探索。
3)建立一套适合土壤中微塑料分离提取和识别定量的标准方法。开展不同分离提取和识别定量方法学的比较研究,形成统一的技术规范。在同一观测条件下对不同的分析方法进行效果评价,筛选出最优的分离纯化和识别定量方法。同时,加强对结果可重现性的研究,并综合不同实验室的研究结果,建立和完善土壤微塑料样品的分析技术规程,增强不同地区监测数据的准确性、可靠性和可比性。
4)如何实现高效分离/识别/定量且不损害微塑料结构,是今后的研究重点。目前,微塑料主流的分离和识别定量方法分别是密度分离法以及红外、拉曼和热分析的相关方法,但是这些方法都存在一定的局限性。土壤是一个复杂体系,有机质含量高,且与微塑料有不同程度的结合,密度分离法无法实现对密度与微塑料相似的有机质的去除,往往需要进行消解处理,而不同的消解方法对微塑料有不同程度的损坏,甚至造成后续识别定量中对特定类别微塑料含量的低估。同时,大多数微塑料的识别定量方法都会对微塑料结构造成一定破坏,且这些破坏大多是不可逆的,可能会影响后续微塑料尺寸和其他物理特性的鉴别。此外,大多数分析方法具有耗时耗力的缺点,需要进一步发展高光谱成像技术结合自动化数据分析等方法,逐步实现微塑料的高效半自动化分析。因此,需要更多的研究来探索适合土壤微塑料的分离检测方案,在理想情况下这种方案成本低、不会改变塑料特性且耗时短。
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