2024, Vol. 61
2. 南京信息工程大学应用气象学院, 南京 210044
2. College of Applied Meteorology, Nanjing University of Information Science and Technology, Nanjing 210044, China
磷是影响作物生长发育、产量提高和品质改善的重要养分元素[1]。世界对粮食和燃料迫切需求促使大量的外源磷持续进入并大量遗存于农业系统中，进而导致土壤遗存磷数量及流失风险日益加剧[2]。土壤遗存磷的有效再利用是提高磷肥利用率的重要方面，而土壤遗存磷向植物根系释放与供应磷的数量和有效性是其中的重要部分，它受土壤pH、氧化还原电位、水分、微生物、有机酸、磷酸酶和质子等因素的共同影响[3-4]。为此，DeLuca等[5]对已有的各种磷分级方法进行优化，根据土壤遗存磷被利用的难易程度，创建了基于生物有效性磷素分级方法（biologically based phosphorus，BBP法），将土壤磷素分为氯化钙溶液提取的可溶性磷（Ca-P）、酶溶液提取的易被酸性磷酸酶和植酸酶矿化的有机磷（En-P）、柠檬酸溶液提取的易被有机酸活化释放的磷（Ci-P）和盐酸提取的潜在无机磷（HC-P）等4个组分，分别模拟植物根际或微生物的根截获、有机酸螯合、酶水解和质子活化这4种磷素捕获吸收机制。该方法能够更加客观地反映土壤根际过程，更好地评估土壤中各种磷形态的生物有效性[6]。蔡观等[6]运用该方法研究发现旱地有效磷主要来自Ca-P和En-P，而水田有效磷主要来源于Ci-P；袁佳慧[7]研究发现太湖稻麦轮作区磷肥减施下稻田土壤生物有效性主要受土壤pH、碱性磷酸酶活性的影响；黄翊兰等[8]研究发现滨海滩涂湿地土壤速效磷主要来源于Ci-P，且影响土壤HC-P含量的主要环境因子是有机质，Ci-P含量主要受含水率影响；刘玉槐等[9]研究发现水稻根际土壤中磷酸酶活性受Ca-P和Ci-P含量影响，而非根际土壤中磷酸酶活性受En-P和HC-P含量影响；蒋炳伸等[3]研究发现双季稻田秸秆还田并配合间歇灌溉或长期淹水均能提高土壤Ci-P和En-P含量，土壤Ci-P对水稻磷吸收起主要贡献；胡怡凡等[10]研究发现，不施磷条件下，轮作降低了土壤Ci-P和HC-P含量，但增加了En-P含量，进而提高了土壤中磷的生物有效性。可见，BBP法已经广泛用于评价不同生态系统中土壤生物有效性磷组分特征，但较少应用此法研究外源磷添加后稻田土壤生物有效性磷组分特征的变化。我国南方土壤利用方式以水田为主，稻田土壤经淹水后，氧化还原电位下降，pH趋于中性，从而影响土壤磷的生物有效性。
红壤广泛分布于我国南方亚热带及热带地区，是我国重要的粮食生产基地，农业产值高[11]。然而，受风化作用与脱硅富铝化作用的双重影响，红壤呈酸性或强酸性，外源磷极易被土壤中铁、铝离子及其化合物吸附固定，进而降低了磷的生物有效性[12-13]。土壤中95%的磷以难溶态存在，无法被作物吸收利用进而导致作物严重“缺磷”。可见，有效评估施磷后稻田磷素的生物有效性是提升红壤磷素肥力、提高土壤遗存磷利用潜能与减少土壤磷流失的前提条件。因此，本研究基于室内培养试验，分析了淹水条件下不同浓度外源磷添加后稻田BBP磷组分及有效磷的增量动态变化，探讨了各组分磷增量对有效磷增量的影响，旨在明确外源磷添加对稻田遗存磷有效性的影响，研究结果将为稻田遗存磷的再利用及土壤磷素高效管理提供数据支持，为提高稻田质量、实现农业可持续健康发展提供理论依据。
1 材料与方法 1.1 土壤样品的采集与制备2018年4月水稻种植前，在江西省鹰潭市孙家典型红壤小流域内选择了坡上中期稻田（MP，20 ~ 30 a）、坡中新稻田（NP，2 ~ 3 a）及坡底老稻田（OP，400 ~ 500 a）三处稻田，在每个田块内按“S”形采集耕层（0 ~ 15 cm）土壤样品10 ~ 15点，混合均匀后带回室内，除去小石块、植物残体以及动物遗体，风干、磨细过筛，保存备用。供试土壤基本理化性质见表 1。
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表 1 供试土壤基本理化性质 Table 1 The basic physical and chemical properties of the tested soil |
称取过2 mm筛的风干新稻田、中期稻田和老稻田土壤样品100.00 g，各6份，每份重复3次，均匀平铺于250 mL培养瓶底部，用少量去离子水润湿土壤后，采用称重法调节土壤含水量至田间最大持水量的60%，以达到水土充分混合均匀的状态，密封后，置于恒温恒湿培养箱中（25 ℃和70%相对湿度）内预培养3天。预培养结束后，分别一次性加入磷浓度为0（CK）、125（P1）、250（P2）、500（P3）、625（P4）、750（P5）mg·L–1的磷酸二氢钾（KH2PO4）溶液100 mL，充分混匀后，再放回培养箱内培养80天。分别于培养的第5、15、30、60和80天进行破坏性采样，将土壤样品风干、磨细、过筛，用于测定土壤有效磷（Bray-P）及BBP磷组分。
1.3 基于生物有效性的磷组分测定采用DeLuca等[5]基于生物有效性磷素分级方法（biologically based phosphorus，BBP法）测定供试土壤BBP磷组分，即称取1.00 g过2 mm筛风干土样，加入20 mL提取液并装入50 mL离心管中，恒温（25 ℃）振荡3 h（230 r·min–1），离心10 min（5 000 r·min–1）后吸取上清液，并采用孔雀石绿比色法测定提取液体中磷的浓度[14]。上述提取液分别为0.01 mol·L–1 CaCl2溶液（Ca-P）、0.01 mol·L–1柠檬酸溶液（Ci-P）、0.02 EU·mL–1酸性磷酸酶和0.02 EU·mL–1碱性磷酸酶混合液（En-P）及1 mol·L–1 HCl溶液（HC-P）。
1.4 土壤理化性质测定土壤pH采用电位法，1 mol·L–1KCl溶液浸泡，液土比为2.5︰1；有效磷（Bray-P）采用盐酸-氟化铵法测定[15]。
1.5 数据处理与分析采用Microsoft Office Excel 2016软件进行数据整理与分析，使用IBM SPSS Statistics 26软件进行方差分析，采用Origin 2022软件进行绘图。
2 结果 2.1 不同水平外源磷添加下稻田有效磷增量及pH外源磷添加后稻田有效磷增量（∆Bray-P）随着磷添加浓度的增加而显著增加。随着培养时间的延长，新稻田（NP）中∆Bray-P呈逐渐增加（0 ~ 80 d）的趋势，而中期稻田（MP）中∆Bray-P呈先降低（0 ~ 30 d）再升高（30 ~ 60 d）后降低（60 ~ 80 d）的趋势，老稻田（OP）中∆Bray-P则无显著变化（图 1）。与CK相比，培养15天后，NP中∆Bray-P达到最大；培养60天后，MP中∆Bray-P达到最大，而OP中∆Bray-P达到最大的时间较为波动（图 1）。外源磷添加量相同时，NP和OP中∆Bray-P均显著高于MP（图 1）。外源磷添加后稻田∆Bray-P与添加磷量（∆TP）的比例（∆Bray-P/∆TP）变化大小顺序为：NP > OP > MP，且与∆Bray-P呈相同变化趋势，但处理间无显著变化（图 1）。
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注：NP、MP、OP分别表示新稻田、中期稻田、老稻田；P1 ~ P5分别表示五种水平磷添加处理，分别为125、250、500、625、750 mg·kg–1。下同。 Note: NP, MP, OP represent new paddy, medium-term paddy, old paddy, respectively; P1 ~ P5 represent five levels of phosphorus addition treatments, which are 125, 250, 500, 625, 750 mg·kg–1, respectively. The same as below. 图 1 外源磷添加下稻田有效磷增量（∆Bray-P）及其占添加磷量（∆TP）比例（∆Bray-P/∆TP）的变化 Fig. 1 Changes of Bray-P increment(∆Bray-P)and its proportion(∆Bray-P/∆TP)to added phosphorus(∆TP)in paddy soil with exogenous phosphorus addition |
外源磷添加下稻田pH随着培养时间的延长，NP中pH呈先降低（0 ~ 30 d）再升高（30 ~ 60 d）后平稳（60 ~ 80 d）的趋势，而MP中pH呈先平稳（0 ~ 30 d）再升高（30 ~ 60 d）后降低（60 ~ 80 d）的趋势，而OP中pH呈逐渐升高（0 ~ 80 d）的趋势（图 2）。
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注：CK表示不添加磷处理。 Note: CK represents treatment without adding phosphorus. 图 2 外源磷添加下稻田pH的变化 Fig. 2 Changes of pH in paddy soil with exogenous phosphorus addition |
外源磷添加可显著增加稻田中Ca-P增量（∆Ca-P），且随着培养时间的延长，NP中∆Ca-P呈先增加（0 ~ 15 d）再降低（15 ~ 80 d）的趋势，而MP中∆Ca-P呈先降低（0 ~ 30 d）再增加（30 ~ 60 d）后降低（60 ~ 80 d）的趋势，OP中∆Ca-P则无显著变化（图 3）。与CK相比，外源磷添加后NP中∆Ca-P增加了135.1% ~ 4 430%，且在培养第15天时NP中的∆Ca-P达到了最大值；MP中∆Ca-P增加了36.6% ~ 1 347%（除第15天外），且在培养第60天时达到了最大值，但培养第15天时，P1和P2处理下MP中的∆Ca-P无显著变化；OP中∆Ca-P则增加了37.2%~ 1 985%（除P1处理外）（图 3）。相同磷添加量下，NP和OP中∆Ca-P均显著高于MP，且随磷添加量降低呈逐渐减少的趋势；而∆Ca-P/∆TP的大小顺序表现为：NP > OP > MP，且与∆Ca-P呈相同变化趋势，但MP和OP中不同磷添加处理间∆Ca-P/∆TP的变化差异不明显，而且在培养第15天时，NP中P3、P4和P5处理下的∆Ca-P/∆TP显著高于CK和P1处理（图 3）。
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图 3 外源磷添加下稻田氯化钙磷增量（∆Ca-P）及其占添加磷量（∆TP）比例（∆Ca-P/∆TP）的变化 Fig. 3 Changes of Ca-P increment(∆Ca-P)and its proportion(∆Ca-P/∆TP)to added phosphorus(∆TP)in paddy soil under exogenous phosphorus addition |
外源磷添加后，NP中∆En-P呈先降低（0 ~ 30 d）再增加（30 ~ 80 d）的趋势，而MP中∆En-P呈先降低（0 ~ 15 d）再增加（15 ~ 60 d）后降低（60 ~ 80 d）的趋势，OP中∆En-P呈先平稳（0 ~ 15 d）再增加（15 ~ 30 d）后降低（30 ~ 80 d）的趋势（图 4）。与CK处理相比，外源磷添加后NP、MP及OP中∆En-P分别增加了54.6 % ~ 3 526%、26.3% ~ 417.9%（第80天除外，且在培养第60天时达到了最高值）及40.3% ~ 540.7%（其中在培养第30天时OP中的∆En-P达到了最高值）（图 4）。相同磷添加量下，NP中∆En-P均显著高于MP和OP，且磷添加量降低呈逐渐减少的趋势；而∆En-P/∆TP的大小顺序表现为：NP > MP > OP，且随培养时间的延长与∆En-P呈相同变化趋势，但处理间无明显变化（图 4）。
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图 4 外源磷添加对稻田酶提取磷增量（∆En-P）及其占磷添加量（∆TP）比例（∆En-P/∆TP）的变化 Fig. 4 Changes of En-P increment(∆En-P)and its proportion(∆En-P/∆TP)to added phosphorus(∆TP)in paddy soil with exogenous phosphorus addition |
外源磷添加后，NP和OP中∆Ci-P呈先增加（0 ~ 15 d）再降低（15 ~ 30 d）后增加（30 ~ 80 d）的趋势，而MP中∆Ci-P呈先增加（0 ~ 15 d）再降低（15 ~ 30 d）后增加（30 ~ 60 d）最后降低（60 ~ 80 d）的趋势（图 5）。与CK处理相比，外源磷添加后NP、MP及OP中∆Ci-P均显著增加，其中，培养第15天时NP、MP和OP中的∆Ci-P均达到了最大值（图 5）。相同磷添加量下，NP和OP中∆Ci-P均显著高于MP，且随磷添加量降低呈逐渐减少的趋势，而∆Ci-P/∆TP的大小顺序表现为：OP > NP > MP，且随着培养时间的延长与∆Ci-P呈相同变化趋势，但各处理间无显著变化（图 5）。
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图 5 外源磷添加对稻田柠檬酸磷增量（∆Ci-P）及其占磷添加量（∆TP）比例（∆Ci-P/∆TP）的变化 Fig. 5 Changes of Ci-P increment(∆Ci-P)and its proportion(∆Ci-P/∆TP)to added phosphorus(∆TP)in paddy soil with exogenous phosphorus addition |
外源磷添加后，NP中∆HC-P呈先增加（0 ~ 60 d）后平稳（60 ~ 80 d）的趋势，而MP中∆HC-P呈先增加（0 ~ 15 d）再降低（15 ~ 30 d）后增加（30 ~ 60 d）最后降低（60 ~ 80 d）的趋势，OP中∆HC-P呈先增加（0 ~ 15 d）再降低（15 ~ 30 d）后增加（30 ~ 60 d）最后平稳（60 ~ 80 d）的趋势（图 6）。与CK处理相比，外源磷添加后NP、MP及OP中∆HC-P均显著增加，其中，培养60天时MP中的∆HC-P达到最大值（图 6）。相同磷添加处理下，MP和OP中∆HC-P均显著高于NP，且随磷添加量增加呈逐渐增加的趋势，∆HC-P/∆TP的大小顺序表现为：MP > OP > NP；且随着培养时间的延长与∆HC-P呈相同变化趋势，但处理间无显著差异（图 6）。
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图 6 外源磷添加下稻田盐酸磷增量（∆HC-P）及其占磷添加量（∆TP）比例（∆HC-P/∆TP）的变化 Fig. 6 Changes of HC-P increment(∆HC-P)and its proportion(∆HC-P/∆TP)to added phosphorus(∆TP)in paddy soil with exogenous phosphorus addition |
由表 2可以看出，外源磷添加后NP中∆Ca-P、∆En-P、∆Ci-P和∆HC-P与∆Bray-P均呈极显著正相关关系（P < 0.01）；∆HC-P与∆pH呈极显著正相关（P < 0.01），而∆Ca-P、∆En-P、∆Ci-P和∆Bray-P与∆pH无显著相关关系（表 2）。MP中∆Ca-P、∆En-P、∆Ci-P和∆HC-P与∆Bray-P均呈极显著正相关关系（P < 0.01）；∆Ci-P和∆HC-P与∆pH呈显著正相关关系（P < 0.01），而∆Ca-P、∆En-P和∆Bray-P均与∆pH无显著相关关系（表 2）。OP中∆Ca-P、∆En-P、∆Ci-P和∆HC-P与∆Bray-P均呈极显著正相关关系（P < 0.01）；∆Ca-P、∆En-P、∆Ci-P、∆HC-P和∆Bray-P与∆pH均呈极显著正相关关系（P < 0.01）（表 2）。
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表 2 稻田生物有效性磷组分增量与∆pH的相关性 Table 2 Correlation between the increment of bioavailable phosphorus components and ∆pH in paddy soil |
通径分析结果（表 3）表明，培养时间（T）、外源磷添加量（∆TP）和∆Ci-P对新稻田土壤中∆Bray-P的直接影响达显著水平，其中∆TP的直接通径系数最大（0.750），且主要通过∆En-P和∆Ci-P对其产生间接正向影响；∆Ci-P对新稻田土壤中∆Bray-P有直接正向影响；T对新稻田土壤中∆Bray-P有直接负向影响（表 3）。∆HC-P和∆Ca-P对中期稻田土壤中∆Bray-P的直接影响达显著水平，其中∆HC-P的直接通径系数最大（0.527），且∆HC-P主要通过∆Ca-P对∆Bray-P有较大的间接正向效应（表 3）。∆TP和∆En-P对老稻田土壤中∆Bray-P的直接影响达显著水平，其中∆TP的直接通径系数最大（0.831），且主要通过∆En-P对其产生间接正向影响（表 3）。三种种植年限稻田整体的通径分析表明，种植年限（Y）、外源磷添加量（∆TP）、∆Ca-P和∆En-P对稻田土壤中∆Bray-P的直接影响达极显著水平，且对稻田土壤中∆Bray-P均有直接正向影响，其中∆TP的直接通径系数最大（0.558）。
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表 3 稻田有效磷增量（∆Bray-P）与生物有效性磷组分增量和∆pH之间的通径系数 Table 3 Path coefficient between ∆Bray-P and the increment of bioavailable phosphorus components and ∆pH in paddy soil |
传统的磷素分级方法偏重于磷化合物的不同形态[16-17]，而模拟生物活化过程的磷素分析方法，即BBP法则可模拟植物根系和微生物对土壤磷素的矿化利用，能够客观地评价土壤不同形态磷的生物有效性[5-7]。稻田淹水后形成的厌氧还原条件对稻田土壤理化性质及土壤磷素迁移转化影响较大[18-20]。淹水培养后，新稻田、中期稻田及老稻田pH均有明显的波动，但pH均逐渐接近中性（图 2），这与以往研究结果[21-22]相一致。
淹水条件下，稻田中BBP组分增量均随着外源磷添加时间的延长而发生明显的变化（图 3 ~ 图 6），这与土壤磷的固定与释放过程直接相关[23]。磷酸盐在土壤中的固定过程主要包括吸附和沉淀，磷施入土壤后会迅速与土壤中物质作用生成难溶性磷酸盐或被土壤颗粒吸附在其表面，这会在很大程度上影响磷的生物有效性[24]。Ca-P是由0.01 mol·L–1 CaCl2溶液提取的可溶性磷[6]。外源磷添加培养过程中，新稻田中∆Ca-P呈先增加后减少的趋势（图 3），主要是因为稻田淹水后，氧化还原电位下降，Fe3+被还原，而生成的磷酸亚铁溶解度较高，使∆Ca-P得以提高[23]，同时氧化铁胶膜被大量破坏，闭蓄态磷的有效性也被提高[25]；但随着培养时间的延长，可溶性磷因逐渐被土壤颗粒吸附固定而数量又减少。中期稻田中∆Ca-P则呈现出先缓慢减少再明显增加最后显著减少的趋势（图 3）。铁铝氧化物含量丰富的稻田多呈酸性，外源磷的固定主要由铁、铝体系所控制[25]，尤其是稻田中大量存在的无定形铁铝的氧化物或水合物是外源磷主要的吸附固定基质[26-27]。此外，淹水后稻田pH发生显著变化，pH的改变会引起土壤中可变电荷的变化，进而影响了土壤胶体表面磷酸根与吸附点位的关系[24]。酸性土壤淹水后，土壤磷的生物有效性提高主要是由土壤pH变化引起的，可见，外源磷添加后中期稻田中∆Ca-P变化主要与土壤对磷的吸附及pH的变化有关。外源磷添加至60天时，中期稻田中∆Ca-P达到了最高值，而此时土壤pH也升至最大值；而后∆Ca-P逐渐降低，而土壤pH也呈降低趋势（图 2）。Vadas等[28]认为土壤淹水后其相对较高的pH可能会促进无定形铁氧化物的形成，导致磷吸附能力降低，这与本研究结果相一致。
En-P是由0.02 EU·mL–1酸性磷酸酶和0.02 EU·mL–1碱性磷酸酶混合提取的易被酸性磷酸酶和植酸酶活化的有机磷[6]，其含量与土壤磷酸酶活性有关，而磷酸酶的活性主要取决于pH、水分含量、温度等环境因子状况。外源磷添加后，中期稻田中∆En-P呈先降低后增加再降低的趋势（图 4）。外源磷添加0 ~ 15天时，中期稻田中∆En-P逐渐减少，这可能是因为淹水后土壤处于还原条件下，结晶性差的铁及其氧化物的巨大表面积增强了对外源磷的固定吸附作用[29]。而后，中期稻田中∆En-P逐渐增加与pH上升有直接关系[30]。而Ci-P大部分来源于吸附态磷或弱束缚于Al-P、Fe-P中的无机活性磷[3]，是由0.01 mol·L–1柠檬酸溶液提取的易被有机酸活化的磷[6]。外源磷添加后，稻田中∆Ci-P呈先增加再降低后增加的趋势（图 5），主要原因是培育前期土壤对磷的吸附较弱以及弱束缚于铁铝氧化物或其水合氧化物中的无机活性磷较多；但随着培养时间延长，土壤对磷的吸附能力明显加强，同时部分磷酸盐被溶解度很小的无定形铁铝等胶膜所包蔽成为闭蓄态磷而被土壤固定，导致∆Ci-P减少[31]。然而，在磷添加第60天时，中期稻田中∆Ci-P显著增加，且与pH呈极显著正相关关系（表 2），因此这与中期稻田pH上升有关（图 2）。不同外源磷添加量对于提高土壤生物有效性磷组分的效果也不尽相同。研究表明，铁铝氧化物对磷吸附的牢固程度及其结合方式受磷酸盐浓度的影响[32]。中期稻田中∆Ci-P/∆TP总体上随着磷添加量的增加而增大（图 5），这表明外源添加磷转化为Ci-P的比例逐渐增加，可能是因为施磷水平低时，磷酸盐与铁铝氧化物形成双基配合物而难于解吸，而施磷水平高时，磷酸盐与铁铝氧化物形成单基配合物而易于解吸[32]。而在外源磷添加5天和30天时，新稻田中∆Ci-P/∆TP随着磷添加量的增加而逐渐降低，这可能是因为不同磷浓度影响了土壤吸附态磷的解吸[33]。
相关性分析结果表明稻田中HC-P含量与∆pH呈显著正相关关系（表 2）。HC-P是由1 mol·L–1盐酸提取的能被质子活化的潜在无机磷[6]。外源磷添加后，新稻田中∆HC-P呈先增加后平稳的趋势，这是因为淹水产生的厌氧环境增加了磷的有效性；在磷添加第60天时，中期稻田中∆HC-P达到最大值，此时土壤pH也升至最大值，且在添加磷后80天时pH降低（图 2），土壤对磷的固定增加，从而引起∆HC-P的降低。
相同磷添加量下，新稻田和老稻田中∆Bray-P较中期稻田高，这可能是新稻田和老稻田中外源添加磷更易于转化为Bray-P。外源磷添加60天时，中期稻田中∆Bray-P/∆TP达到最高值，主要原因是中期稻田pH显著升高导致磷酸铁和磷酸铝的溶解度增加[20]。
通径分析（表 3）显示，磷添加量（∆TP）对新稻田和老稻田中∆Bray-P的直接正效应最大，分别达到显著水平和极显著水平，说明外源磷是新稻田和老稻田中∆Bray-P的主要来源。就稻田BBP组分磷增量对∆Bray-P的直接效应而言，∆Ci-P的对新稻田中的∆Bray-P直接正效应较大，达到显著水平，说明新稻田中∆Bray-P主要来自∆Ci-P。∆HC-P和∆Ca-P对中期稻田中∆Bray-P的直接正效应最大，且均达到极显著水平（表 3），这表明中期稻田中∆Bray-P主要来自∆HC-P和∆Ca-P；而∆En-P对老稻田中的∆Bray-P有显著直接正效应（表 3），这表明老稻田中∆Bray-P主要来自∆En-P。新稻田中∆Ci-P、∆Ca-P和∆Bray-P均在外源磷添加后第15天时达到最大值，其中∆Ci-P是影响∆Bray-P的主要因子，中期稻田中∆Ca-P、∆En-P、∆HC-P和∆Bray-P均在外源磷添加后第15天时达到最大值，而∆Ca-P和∆HC-P是影响∆Bray-P的主要因子，因此，对新稻田施用磷肥时结合作物的需磷旺盛期并提前施肥可增加土壤肥力并提高磷肥利用效率。
4 结论外源磷添加可显著增加稻田磷的生物有效性，各BBP组分磷增量大小依次为：∆Ca-P < ∆En-P < ∆Ci-P < ∆HC-P。外源磷添加对新稻田和老稻田中∆Bray-P影响最大；新稻田、中期稻田及老稻田∆Bray-P分别主要来自易被有机酸活化释放的磷和潜在无机磷、可溶性磷以及易被酸性磷酸酶和植酸酶矿化的有机磷。不同年限稻田生物有效性磷组分对外源磷添加的响应不同，对新稻田和中期稻田施磷可分别考虑在作物需磷旺盛时期15和60天前进行，这将有利于提高磷肥肥效和利用率，且能减少土壤磷流失带来的环境风险。
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